Haworthia stripedii の育て方? Haworthia stripedii の繁殖方法とテクニック

多肉植物を育てることが今人気です。多肉植物は植え方が簡単で、その後の管理やメンテナンスも面倒ではないので、多くの人が多肉植物を育てるのが好きです。今回ご紹介するのはハオルチアです。初心者の方はハオルチアを植える際にどのような点に注意すれば良いのでしょうか？次に、ハオルチア ストライタの育て方を紹介します。

ハオルチア ストライタの育て方

ハオルチア ストライタの繁殖方法

一般的に使用される繁殖方法は、分割と挿し木です。株分けは一年中できます。通常、4月か5月に植え替えるときに、親株の周りの若い株を剥がし、直接鉢に植えます。挿し木は5月から6月の間​​に行うのが最適です。肉厚の葉と少量の半木質部分を切り取り、きれいな川砂の基質に挿します。根付くまで約20〜25日かかります。根が2〜3cmの長さになったら培養土に移植するのが最適です。株分けは室内であれば一年中行えますが、毎年4月から5月が最も適しています。親株の隣の若い株を直接切り取り、少し乾燥させてから別の鉢に植えます。

分割による増殖

株分けの時期: 土が解けた後の早春（2月か3月）に行うのが最適です。
株分けの方法: 鉢から母植物を取り出し、余分な土を払い落とし、絡まった根をできるだけ分離し、鋭利なナイフを使用して 2 つ以上の植物に分割します。各植物には相当な根系が必要であり、生存を容易にするために葉を適切に切り取る必要があります。

鉢の消毒

分けた小さな苗を1500倍に薄めたベノミルに5分間浸し、取り出して乾燥させてから鉢植えにします。植え付け直後にベノミルを使用して根に灌水することもできます。

分割後の管理

株分けして鉢上げした後は、根元まで灌水するか、一度たっぷりと水をあげてください。根系がひどく損傷し、水分を吸収する能力が極めて弱いため、回復して新しい根が発芽するまでに約 3 ～ 4 週間かかります。したがって、株分け後 3 ～ 4 週間は根腐れを防ぐために水やりを控える必要があります。ただし、葉の蒸散には影響しません。葉の水分バランスを維持するために、1 日に 1 ～ 3 回葉に散水する必要があります (気温が高いときは多めに散水し、気温が低いときは少なめに散水するか、まったく散水しません)。この期間中は肥料を与えないでください。株分け後は強い日差しにも注意が必要です。日陰の小屋に置いて管理するのが最適です。

組織培養による急速な増殖

1. 材料: ハオルチア ストライタの茎の根元にある若い芽 (植物細胞は万能性があり、つまり、どの植物細胞も植物体を形成する能力を持っています。言い換えれば、どの高度に分化した細胞も元の未分化細胞に戻る能力があり、他の形態の高度に分化した細胞に分化することができます。この「万能性」は、植物組織培養の理論的根拠です。植物細胞のこの特性に基づいて、植物体のどの高度に分化した細胞も任意に培養することができ、若い芽は高度に分化した部分であるため、これを選択します)。縞模様のハオルチア

2.培養条件：基本培地としてMSを使用する。 （成分：KNO3：1650、NH4NO3：1900、MgSO4.7H2O：370、KH2PO4：170、CaCl2.2H2O：440、MnSO4.4H2O：22.3、ZnSO4.7H2O：8.6、H3BO3：6.2、NaMoO4.2H2O：0.25、CuSO4.5H2O：0.025、Na2.EDTA：37.3、FeSO4.7H2O：27.8、イノシトール：100、ナイアシン：0.5、グリシン：2、チアミン塩酸塩：0.1、ピリドキシン塩酸塩：0.5、KI：0.83、CoCl2.6H2O：0.025、スクロース）

鉢植えのハオルチア母植物の茎の根元から、4～5 枚の若い葉が付いた腋芽を切り取ります。流水で 5 分間すすぎ、0.2% クロルヘキシジンに 30 分間浸し、流水で 10 分間すすぎます (この方法は水を節約し、汚染率が非常に低くなります)。材料をクリーンベンチに置き、0.1% HgCl2で8分間消毒し、滅菌水で10回すすぎ、滅菌ろ紙で水分を吸収します。芽をメスで切り取り、切り取った若い葉を0.5cmの小片に分割しました。培地に接種して培養します。

3. 芽の培養：ハオルチア ストライタの芽は培地上で急速に膨らみ成長します。約20日後、細長い芽を3〜4つに切り、別の培地に接種します。さらに 1 週​​間経つと、各芽の根元に若い芽の束 (約 5 ～ 10 個) が芽生えます。

4. カルスと芽の誘導: 若い葉の断片を培地で約 2 週間培養すると、傷の表面に無色透明のカルス組織の層が現れます。 20日間培養した後、カルスは増殖しませんでしたが、2〜3個の小さな芽がそこから成長しました。芽を切り取り、別の培養培地に移して、小さな植物のグループを形成しました。

5. 根の誘導と形質転換: 若い葉の断片を D に置き、1 か月間培養します。傷口に多数の白い球状の根が形成され、増え続けます。これらの根を培地に移し、約 1 週間培養しました。根は緑色に変わり、カルス組織が現れました。別の培地に移してから 2 週間後、球形の胚が形成され、一部の胚は若い葉を成長させ始めました。

6. 継代培養と急速増殖：得られた植物のin vitro増殖システムは、繰り返しの分離と微細切断を通じて幾何学的増殖を達成することができます。このプロセスは、いわゆる急速微細増殖または急速増殖と呼ばれます。植物の急速な増殖は、通常、試験管内増殖ラインが確立された後に行われます。カルス組織も急速に増殖できる場合があり、その場合は通常、液体懸濁培養が使用されます。上記で得られた実生塊または球状胚は、大まかに分割して別の培地に接種すると、平均して２週間ごとに倍増し、大量に増殖することができる。 1つの芽をエクソソームとして使用し、2か月後に20ボトル以上の継代培養植物（ボトルあたり約30植物）が得られました。

7. 苗を強化して根付かせる: 大きな苗を培地 E に植え、光の強度を 10 時間/日に上げると、1 週間後に根付きます。さらに 1 週​​間栽培した後、移植できます。 （組織培養技術を特定の植物の全体的な形の構築に適用する場合、つまり茎、根、葉を持つ苗木を得るためには、一定の苗強化処理を経る必要があり、それによって無菌環境から細菌環境へ、人工培養環境から自然環境へ徐々に移行します。ボトル苗木の場合は、殺菌土壌の使用、保湿、保温など、徐々に環境を変える「移行処理法」を採用するのが一般的であり、同時に、光の増加、栄養液の補充など、一定の苗強化処理を行わなければなりません。一連の処理の後、組織培養から培養された「クローン苗木」はうまく生き残ります。）

8. 移植: 種を取り出す前に瓶を開け、2日間強固にします。根付いた苗から培地を洗い流し、バーミキュライト＋パーライトの無菌マトリックスに移し、湿度を維持すると、生存率は90％以上になります。